Etude phytochimique et activités biologiques (antioxydante et antimicrobienne) de l’extrait de tannins de Pituranthos chloranthus (Ghezzeh)
Des informations générales:
Le niveau |
Master |
Titre |
Etude phytochimique et activités biologiques (antioxydante et antimicrobienne) de l’extrait de tannins de Pituranthos chloranthus (Ghezzeh) |
SPECIALITE |
BIOLOGIE MOLECULAIRE ET CELLULAIRE |
Page de garde:
Sommaire:
Introduction
Partie I: Synthèse bibliographique
Chapitre I: Présentation de Pituranthos chloranthus
1. La famille des Apiacées.
2.Pituranthos chloranthus
2.1. Description botanique
2.2. Position systématique
2.3. Usages traditionnels.
2.4. Les études antérieurs sur le genre Pituranthos
Chapitre II: Les composées phénoliques.
1. Généralité.
2. Définition des composées phénoliques.
3. Les principales classes des composés phénoliques .
4. Les tannins
4.1. Définition
4.2. Classification biochimique des tannins.
4.3. Propriétés physico-chimiques et biologiques
4.4. Rôle des tannins dans les plantes
4.5. Facteurs de variation de la teneur en tannins
4.6. Analyses biochimiques des tannins.
Chapitre III : les antioxydants.
1. Le stress oxydant et les radicaux libres
2. Les antioxydants
2.1. Définition
2.3. Les sources d’antioxydants.
3. L’évaluation de l’activité antioxydant.
3.1. Introduction.
3.2. Méthodes de piégeage des radicaux stables et évaluation de leur capacité de réduction 18
➤ Piègeage du radical 2,2-diphenyl-1 picrylhydrazyl (DPPH●)
➤ Réduction de fer (FRAP: Ferric reducing antioxidant power).
➤ Activité antioxydant totale (CAT).
Partie II: Partie expérimentale
Chapitre I: Matériel végétal
1. Origine géographique et période de récolte des plantes
2. Identification de la plante
3- Station d’étude
4. Conservation des échantillons
Chapitre II: Tests Phytochimiques.
1. Introduction
2. Tests phytochimiques
2.1. Epuisement du matériel végétal avec de l’eau à chaude.
2.2. Epuisement du matériel végétal avec du l’éthanol.
2.3. Macération du matériel végétal avec l’acide sulfurique (H2SO4).
2.4. Détection des coumarines
2.5. Détection des stérols et triterpénes
Chapitre III: Préparation des extraits et dosage des tannins.
1. Extraction des extraits bruts méthanolique et aqueux
2. Calcul du rendement
3. Dosage des tannins condensés
4. Extraction sélective des tannins
Chapitre IV: Etude des pouvoirs antioxydant et antimicrobien.
1. Etude du pouvoir antioxydant.
1.1. Capacité antioxydante totale (CAT).
1.2. Réduction du fer (FRAP: Ferric reducing antioxidant power).
1.3. Piégeage du radical DPPH*
2. Etude du pouvoir antimicrobien
2.1. Les souches testées.
2.2. Conservation des souches
2.3. Les milieux de culture utilisés.
2.4. Les techniques microbiologiques.
2.4.1. Sensibilité des souches vis-à-vis des antibiotiques et antifongique
2.4.2. Sensibilité des souches vis-à-vis de l’extrait des tannins de la partie aérienne
de P.chloranthus
3. Analyse statistique des résultats
Partie III: Résultats et discussion
I. Tests phytochimiques
II. Dosage des tannins.
1. Les rendements en extraits secs de la partie aérienne de Pituranthos chloranthus
2. Dosage des tannins
III. Etude de l’activité antioxydante
1. La capacité antioxydante totale (CAT).
2. Réduction du fer :FRAP (Ferric reducing antioxidant power)
3. La méthode de piégeage de radical libre DPPH
IV. Pouvoir antimicrobien
1. Résultats de l’ Antibiogramme.
1.1. Escherichia coli ATCC 8739.
1.2. Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853
1.3. Klebsiella pneumonia ATCC 13047
1.4. Staphylococcus aureus ATCC 6538
1.5. Micrococcus luteus ATCC 9341.
1.6. Listeria monocytogenes ATCC 15313.
2. Pouvoir antifongique
3. Pouvoir antimicrobien de l’extrait sélectif des tannins
Conclusion
Références bibliographiques
Annexe
Partie I: Synthèse bibliographique
Chapitre I: Présentation de Pituranthos chloranthus
1. La famille des Apiacées.
2.Pituranthos chloranthus
2.1. Description botanique
2.2. Position systématique
2.3. Usages traditionnels.
2.4. Les études antérieurs sur le genre Pituranthos
Chapitre II: Les composées phénoliques.
1. Généralité.
2. Définition des composées phénoliques.
3. Les principales classes des composés phénoliques .
4. Les tannins
4.1. Définition
4.2. Classification biochimique des tannins.
4.3. Propriétés physico-chimiques et biologiques
4.4. Rôle des tannins dans les plantes
4.5. Facteurs de variation de la teneur en tannins
4.6. Analyses biochimiques des tannins.
Chapitre III : les antioxydants.
1. Le stress oxydant et les radicaux libres
2. Les antioxydants
2.1. Définition
2.3. Les sources d’antioxydants.
3. L’évaluation de l’activité antioxydant.
3.1. Introduction.
3.2. Méthodes de piégeage des radicaux stables et évaluation de leur capacité de réduction 18
➤ Piègeage du radical 2,2-diphenyl-1 picrylhydrazyl (DPPH●)
➤ Réduction de fer (FRAP: Ferric reducing antioxidant power).
➤ Activité antioxydant totale (CAT).
Partie II: Partie expérimentale
Chapitre I: Matériel végétal
1. Origine géographique et période de récolte des plantes
2. Identification de la plante
3- Station d’étude
4. Conservation des échantillons
Chapitre II: Tests Phytochimiques.
1. Introduction
2. Tests phytochimiques
2.1. Epuisement du matériel végétal avec de l’eau à chaude.
2.2. Epuisement du matériel végétal avec du l’éthanol.
2.3. Macération du matériel végétal avec l’acide sulfurique (H2SO4).
2.4. Détection des coumarines
2.5. Détection des stérols et triterpénes
Chapitre III: Préparation des extraits et dosage des tannins.
1. Extraction des extraits bruts méthanolique et aqueux
2. Calcul du rendement
3. Dosage des tannins condensés
4. Extraction sélective des tannins
Chapitre IV: Etude des pouvoirs antioxydant et antimicrobien.
1. Etude du pouvoir antioxydant.
1.1. Capacité antioxydante totale (CAT).
1.2. Réduction du fer (FRAP: Ferric reducing antioxidant power).
1.3. Piégeage du radical DPPH*
2. Etude du pouvoir antimicrobien
2.1. Les souches testées.
2.2. Conservation des souches
2.3. Les milieux de culture utilisés.
2.4. Les techniques microbiologiques.
2.4.1. Sensibilité des souches vis-à-vis des antibiotiques et antifongique
2.4.2. Sensibilité des souches vis-à-vis de l’extrait des tannins de la partie aérienne
de P.chloranthus
3. Analyse statistique des résultats
Partie III: Résultats et discussion
I. Tests phytochimiques
II. Dosage des tannins.
1. Les rendements en extraits secs de la partie aérienne de Pituranthos chloranthus
2. Dosage des tannins
III. Etude de l’activité antioxydante
1. La capacité antioxydante totale (CAT).
2. Réduction du fer :FRAP (Ferric reducing antioxidant power)
3. La méthode de piégeage de radical libre DPPH
IV. Pouvoir antimicrobien
1. Résultats de l’ Antibiogramme.
1.1. Escherichia coli ATCC 8739.
1.2. Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853
1.3. Klebsiella pneumonia ATCC 13047
1.4. Staphylococcus aureus ATCC 6538
1.5. Micrococcus luteus ATCC 9341.
1.6. Listeria monocytogenes ATCC 15313.
2. Pouvoir antifongique
3. Pouvoir antimicrobien de l’extrait sélectif des tannins
Conclusion
Références bibliographiques
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