Détection de la formation du biofilm de Staphylococcus aureus isolée de tubes endotrachéales par différentes techniques
Des informations générales:
Le niveau |
Master |
Titre |
Détection de la formation du biofilm de Staphylococcus aureus isolée de tubes endotrachéales par différentes techniques |
SPECIALITE |
Microbiologie et contrôle de qualité |
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Sommaire:
Tables des matières
Introduction
Première partie : Synthèse bibliographique
Chapitre 1: Les infections associées aux soins
Introduction
1. Définition d’un dispositif médical.
1.1. La sonde d’intubation trachéale
1.2. Les caractéristiques de la sonde d’intubation trachéale
2. Les infections associées à la présence d’une sonde endotrachéale
3. Les facteurs de risque des infections associées aux soins aux sondes endotrachéales
4. Pneumopathies acquises sous ventilation mécanique.
Chapitre 2: Staphylococcus aureus.
1. Taxonomie.
2. Morphologie et structure.
3. Croissance
4. Les facteurs de virulences
4.1. Les toxines
4.1.1. Des toxines à action membranaire ou pore-forming-toxins (PFTs)
4.1.2. Les toxines à activité protéolytique « Les épidermolysines »
4.1.3. Les Superantigènes
4.2.Les enzymes
4.3. Les protéines de surface ou facteurs d’adhérence (MSCRAMM).
4.4. Formation du biofilm
5. Les infections causées par staphylococcus aureus
Chapitre 2: Biofilm bactérien
1. Introduction
2. Définition
3. Les étapes de la formation d’un biofilm
3.1. Adhésion réversible
3.2. Adhésion irréversible
3.3. Formation de microcolonies
3.4. Maturation du biofilm
3.5. Dispersion du biofilm
4. Les facteurs favorisant la formation du biofilm
4.1. Les caractéristiques de la surface
4.2. Les caractéristiques du milieu
4.3. Les propriétés de cellule
5. Elimination de formation de biofilm par des substances naturelles
5.1. La nigelle
Deuxième partie : Matériel et méthodes.
1. Lieu d’étude
2. Prélèvements et Isolement
3. Identification
4. Conservation des souches
5. Détection et évaluation de la formation du biofilm in vitro.
5.1.Méthode de plaque de culture de tissus (TCP)
5.2. Technique de Rouge Congo Agar
5.3. Effet du glucose et du saccharose sur la formation de biofilm par la technique (TCP)
6. Activité anti-biofilm de l’huile de nigelle
7. Activité de l’huile de nigelle sur un biofilm préformé
Troisième partie : Résultats et discussion
1. Prélèvements
1.1. Résultats de prélèvements.
1.2. Répartition des souches
2. Caractères bactériologiques des souches S. aureus
2.1. Aspect macroscopique
2.2. Caractères biochimiques
3. Détection et évaluation de la formation du biofilm des S. aureus isolées de sonde endotrachéale
3.1. Techniques de plaque de culture 96 puis (TCP)
3.2. Technique de Rouge Congo Agar
3.3. Effet du glucose et du saccharose sur la formation du biofilm par la technique TCP.
4. Activité anti-biofilm de l’huile de nigelle
5. Activité de l’huile de nigelle sur un biofilm préformé.
Conclusion
Références bibliographiques
Annexe 01: Caractéristiques des 50 patients inclus dans l’étude
Annexe 02: Résultats des DO avec un BHIB sans supplément
Annexe 03: Résultats des DO avec un BHIB supplément (Glucose 1%, 2%) et (Saccharose 1%, 2%).
Annexe 04: Milieux de culture
Introduction
Première partie : Synthèse bibliographique
Chapitre 1: Les infections associées aux soins
Introduction
1. Définition d’un dispositif médical.
1.1. La sonde d’intubation trachéale
1.2. Les caractéristiques de la sonde d’intubation trachéale
2. Les infections associées à la présence d’une sonde endotrachéale
3. Les facteurs de risque des infections associées aux soins aux sondes endotrachéales
4. Pneumopathies acquises sous ventilation mécanique.
Chapitre 2: Staphylococcus aureus.
1. Taxonomie.
2. Morphologie et structure.
3. Croissance
4. Les facteurs de virulences
4.1. Les toxines
4.1.1. Des toxines à action membranaire ou pore-forming-toxins (PFTs)
4.1.2. Les toxines à activité protéolytique « Les épidermolysines »
4.1.3. Les Superantigènes
4.2.Les enzymes
4.3. Les protéines de surface ou facteurs d’adhérence (MSCRAMM).
4.4. Formation du biofilm
5. Les infections causées par staphylococcus aureus
Chapitre 2: Biofilm bactérien
1. Introduction
2. Définition
3. Les étapes de la formation d’un biofilm
3.1. Adhésion réversible
3.2. Adhésion irréversible
3.3. Formation de microcolonies
3.4. Maturation du biofilm
3.5. Dispersion du biofilm
4. Les facteurs favorisant la formation du biofilm
4.1. Les caractéristiques de la surface
4.2. Les caractéristiques du milieu
4.3. Les propriétés de cellule
5. Elimination de formation de biofilm par des substances naturelles
5.1. La nigelle
Deuxième partie : Matériel et méthodes.
1. Lieu d’étude
2. Prélèvements et Isolement
3. Identification
4. Conservation des souches
5. Détection et évaluation de la formation du biofilm in vitro.
5.1.Méthode de plaque de culture de tissus (TCP)
5.2. Technique de Rouge Congo Agar
5.3. Effet du glucose et du saccharose sur la formation de biofilm par la technique (TCP)
6. Activité anti-biofilm de l’huile de nigelle
7. Activité de l’huile de nigelle sur un biofilm préformé
Troisième partie : Résultats et discussion
1. Prélèvements
1.1. Résultats de prélèvements.
1.2. Répartition des souches
2. Caractères bactériologiques des souches S. aureus
2.1. Aspect macroscopique
2.2. Caractères biochimiques
3. Détection et évaluation de la formation du biofilm des S. aureus isolées de sonde endotrachéale
3.1. Techniques de plaque de culture 96 puis (TCP)
3.2. Technique de Rouge Congo Agar
3.3. Effet du glucose et du saccharose sur la formation du biofilm par la technique TCP.
4. Activité anti-biofilm de l’huile de nigelle
5. Activité de l’huile de nigelle sur un biofilm préformé.
Conclusion
Références bibliographiques
Annexe 01: Caractéristiques des 50 patients inclus dans l’étude
Annexe 02: Résultats des DO avec un BHIB sans supplément
Annexe 03: Résultats des DO avec un BHIB supplément (Glucose 1%, 2%) et (Saccharose 1%, 2%).
Annexe 04: Milieux de culture
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