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Doctorat

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Epidémiologie et potentiel zoonotique des protozoaires parasites, Giardia et Cryptosporidium, chez les animaux d’élevage dans la steppe algérienne : Cas de Laghouat et régions limitrophes

Titre

Impact des zoonoses parasitaires sur la santé publique via l’eau, les aliments et l’environnement

SPECIALITE


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Epidémiologie et potentiel zoonotique des protozoaires parasites, Giardia et Cryptosporidium, chez les animaux d'élevage dans la steppe algérienne : Cas de Laghouat et régions limitrophes


Sommaire:

Introduction Chapitre I. L’état actuel des connaissances sur Giardia et Cryptosporidium chez les animaux d’élevage et l’homme I. Historique I.1. Cryptosporidiose I.2. Giardiase II. Biologie et systématique II.1. Etude de Cryptosporidium II.1.1. Morphologie et structure II.1.2. Cycle biologique II.1.3. Systématique II.2. Etude de Giardia II.2.1. Morphologie et structure II.2.2. Cycle de vie II.2.3. Systématique III. Rôle pathogène III.1. Expression clinique III.1.1. Cryptosporidiose III.1.2. Giardiase III.2. Pouvoir pathogène VI. Epidemiologie VI.1. Répartition et prévalence VI.1.1. Répartition VI.1.1.1. Répartition en fonction de la situation géographique VI.1.1.2. Répartition en fonction de l’espèce d’élevage VI.1.2. Prévalence VI.2. Sources de contamination et modes de transmission VI.3. Facteurs prédisposants VI.3.1. Facteurs intrinsèques VI.3.2. Facteurs extrinsèques V. Diagnostic V.1. Méthodes coproscopiques V.1.1. Examen microscopique sans coloration V.1.1.1. Examen direct sans enrichissement V.1.1.2. Examen direct avec enrichissement V.1.2. Examen microscopique après coloration V.1.2.1. Coloration au MIF (Merthiolate Iode Formol) V.1.2.2. Coloration au Giemsa V.1.2.3. Coloration à l’hématoxyline ferrique V.1.2.4. Coloration au trichrome de Gomori-Wheatley V.1.2.5. Coloration négative de Heine V.1.2.6. Coloration à l’Auramine-Phénol V.1.2.7. Coloration de Zeihl-Neelsen modifiée V.2. Méthodes immunologiques V.2.1. Le test d’ELISA V.2.2. Immunofluorescence direct (DFA) V.2.3. Analyse immunochromatographique (ICT) V.3. Méthodes moléculaires V.3.1. Techniques de PCR V.3.1.1. PCR simple V.3.1.2. PCR nichée V.3.1.3. PCR en temps réel (qPCR) V.3.1.4. PCR multiplexe V.3.2. Marqueurs (cibles) utilisés en PCR IV.1. Traitement IV.2. Prophylaxie Chapitre II. Méthodologie I. Echantillonnage I.1. Régions et sites d’étude I.2. Animaux et élevages étudiés I.3. Prélèvement et conservation II. Analyse de laboratoire II.1. Analyses par approches classiques II.1.1. Préparation des frottis et coloration de Ziehl-Neelsen modifiée II.2.2. Concentration par flottation au sulfate de zinc 33% II.1.3. Examen microscopique II.2. Analyse par approches moléculaires II.2.1. Extraction d’ADN II.2.2. Analyse PCR II.2.2.1. Préparation à la PCR II.2.2.2. Procédure de la PCR II.2.2.3. Révélation des produits de la PCR II.2.2.4. Lecture et interprétation des résultats II.2.3. Séquençage II.2.3.1. Purification des produits de PCR secondaire II.2.3.2. Réaction de séquençage II.2.3.3. Analyse des séquences III. Analyse statistique Chapitre III. Résultats et discussion: Etude de Giardia et Cryptosporidium chez les animaux d’élevage dans la steppe centrale d’Algérie I. Etude par approches classiques I.1. Résulats des analyses coproscopiques I.2. Résulats des analyses épidémiologiques I.2.1. Prévalence I.2.2. Etude des facteurs de risque I.2.2.1. Age I.2.2.2. Le type d’espèce d’élevage I.2.2.3. Région d’étude I.2.2.4. Type d’élevage I.2.3. Statut clinique I.2.3.1. Fréquence de Giardia spp. en fonction du statut clinique I.2.3.2. Fréquence de Cryptosporidium en fonction du statut clinique II. Etude par approches moléculaires II.1. Caractérisation moléculaire de Giardia intestinalis et Cryptosporidium spp. Chez les animaux d’élevage dans la steppe centrale d’Algérie II.2. Potentiel zoonotique de G intestinalis associé aux animaux d’élevage dans la steppe centrale d’Algérie II.3. Potentiel zoonotique de Cryptosporidium spp. associé aux animaux d’élevage dans la steppe centrale d’Algérie Conclusion et perspectives References bibligraphiques

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